The Experts below are selected from a list of 36603 Experts worldwide ranked by ideXlab platform

Gracindo, Cristiane Vinhaes - One of the best experts on this subject based on the ideXlab platform.

  • Avaliação do desempenho e da toxicidade em ovinos mantidos em pastagens de Brachiaria decumbens, Brachiaria brizantha, Panicum maximum var Aires e Andropogon gayanus var Planaltina
    2011
    Co-Authors: Gracindo, Cristiane Vinhaes
    Abstract:

    Frente à crescente implantação de Brachiaria spp nos solos do Centro-Oeste, o presente projeto objetivou analisar o desempenho de ovinos submetidos ao pastejo em Brachiaria decumbens e Brachiaria brizantha, em comparação ao pastejo em Panicum maximum var Aires e Andropogon gayanus var Planaltina. Foram avaliados, também, a presença de sinais clínicos indicativos de intoxicação por Brachiaria spp e parâmetros bioquímicos séricos como aspartato aminotransferase (AST), gama-glutamiltransferase (GGT), proteína total (PT), albumina, uréia e creatinina em ovinos, bem como, quantificou-se os teores de saponinas litogênicas e esporos de Pithomyces chartarum, nas amostras de pastagem coletadas das quatro forrageiras. Foram utilizados 48 animais dividos em lotes homogêneos constituídos por machos castrados, com peso médio de 20kg, idades entre quatro e cinco meses, oriundos de rebanhos com contato prévio com Brachiaria spp. há mais de três anos consecutivos e animais naive, ou seja, que nunca haviam tido contato com Brachiaria spp. O desempenho dos animais foi semelhante entre os lotes de ovinos mantidos em piquetes de B. decumbens, B. brizantha e P. maximum var Aires, mas inferior no grupo que permaneceu na área formada por A. gayanus var Planaltina (p≤0,05). Os animais com contato prévio a Brachiaria spp. não apresentaram sinais clínicos compatíveis com intoxicação decorrentes à ingestão da forrageira. Porém, dois animais naive mantidos no piquete de B. decumbens, se intoxicaram, e um deles morreu, sugerindo uma possível forma de adaptação dos animais ao pastejo na gramínea, que lhes confira maior resistência à intoxicação. _______________________________________________________________________________ ABSTRACTDue to the increasing deployment of Brachiaria spp in the soil of the Midwest, this project aims to evaluate the toxicity and performance of sheep grazing Brachiaria decumbens and Brachiaria brizantha, compared with Panicum maximum var Aires and Andropogon gayanus var Planaltina pastures. The presence of clinical signs of poisoning by Brachiaria spp and serum biochemical parameters: aspartate aminotransferase (AST), gamma-glutamyltransferase (GGT), total protein (TP), albumin, urea and creatinine were evaluated. The levels of saponins and Pithomyces chartarum spores in pasture samples were also evaluated. The experiment used 48 animals divided into homogeneous lots consisting of castrated males, average weight 20 kg, aged between four and five months, coming from herds with no previous contact with Brachiaria spp. for more than three consecutive years and naive animals, i.e., that never had contact with Brachiaria spp. The animal performance was similar in sheep kept in paddocks with B. decumbens, B. brizantha and P. maximum var Aires, but lower in the group that remained in the area formed by A. gayanus var Planaltina (p ≤ 0.05). Animals with previous contact Brachiaria spp. showed no clinical signs consistent with poisoning from the ingestion of forage. However, two naive animals kept in the paddock of B. decumbens, were intoxicated, and one of them died, suggesting a possible form of adaptation of animals to grazing on Brachiaria spp., which gives them some degree of resistance to poisoning

  • Avaliação do desempenho e da toxicidade em ovinos mantidos em pastagens de Brachiaria decumbens, Brachiaria brizantha, Panicum maximum var Aires e Andropogon gayanus var Planaltina
    2010
    Co-Authors: Gracindo, Cristiane Vinhaes
    Abstract:

    Dissertação (mestrado)—Universidade de Brasília, Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, 2010.Frente à crescente implantação de Brachiaria spp nos solos do Centro-Oeste, o presente projeto objetivou analisar o desempenho de ovinos submetidos ao pastejo em Brachiaria decumbens e Brachiaria brizantha, em comparação ao pastejo em Panicum maximum var Aires e Andropogon gayanus var Planaltina. Foram avaliados, também, a presença de sinais clínicos indicativos de intoxicação por Brachiaria spp e parâmetros bioquímicos séricos como aspartato aminotransferase (AST), gama-glutamiltransferase (GGT), proteína total (PT), albumina, uréia e creatinina em ovinos, bem como, quantificou-se os teores de saponinas litogênicas e esporos de Pithomyces chartarum, nas amostras de pastagem coletadas das quatro forrageiras. Foram utilizados 48 animais dividos em lotes homogêneos constituídos por machos castrados, com peso médio de 20kg, idades entre quatro e cinco meses, oriundos de rebanhos com contato prévio com Brachiaria spp. há mais de três anos consecutivos e animais naive, ou seja, que nunca haviam tido contato com Brachiaria spp. O desempenho dos animais foi semelhante entre os lotes de ovinos mantidos em piquetes de B. decumbens, B. brizantha e P. maximum var Aires, mas inferior no grupo que permaneceu na área formada por A. gayanus var Planaltina (p≤0,05). Os animais com contato prévio a Brachiaria spp. não apresentaram sinais clínicos compatíveis com intoxicação decorrentes à ingestão da forrageira. Porém, dois animais naive mantidos no piquete de B. decumbens, se intoxicaram, e um deles morreu, sugerindo uma possível forma de adaptação dos animais ao pastejo na gramínea, que lhes confira maior resistência à intoxicação. _______________________________________________________________________________ ABSTRACTDue to the increasing deployment of Brachiaria spp in the soil of the Midwest, this project aims to evaluate the toxicity and performance of sheep grazing Brachiaria decumbens and Brachiaria brizantha, compared with Panicum maximum var Aires and Andropogon gayanus var Planaltina pastures. The presence of clinical signs of poisoning by Brachiaria spp and serum biochemical parameters: aspartate aminotransferase (AST), gamma-glutamyltransferase (GGT), total protein (TP), albumin, urea and creatinine were evaluated. The levels of saponins and Pithomyces chartarum spores in pasture samples were also evaluated. The experiment used 48 animals divided into homogeneous lots consisting of castrated males, average weight 20 kg, aged between four and five months, coming from herds with no previous contact with Brachiaria spp. for more than three consecutive years and naive animals, i.e., that never had contact with Brachiaria spp. The animal performance was similar in sheep kept in paddocks with B. decumbens, B. brizantha and P. maximum var Aires, but lower in the group that remained in the area formed by A. gayanus var Planaltina (p ≤ 0.05). Animals with previous contact Brachiaria spp. showed no clinical signs consistent with poisoning from the ingestion of forage. However, two naive animals kept in the paddock of B. decumbens, were intoxicated, and one of them died, suggesting a possible form of adaptation of animals to grazing on Brachiaria spp., which gives them some degree of resistance to poisoning

Araujo, Rebekah Rank - One of the best experts on this subject based on the ideXlab platform.

  • Avaliação histopatológica do fígado de bovinos mantidos em pastagens de Brachiaria spp. provenientes de abatedouros no Brasil
    'Biblioteca Central da UNB', 2016
    Co-Authors: Araujo, Rebekah Rank
    Abstract:

    Dissertação (mestrado)—Universidade de Brasília, Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, Programa de Pós-Graduação em Saúde Animal, 2016.A Brachiaria spp. contêm saponinas esteroidais litogênicas que induzem a formação de cristais no sistema biliar. A hidrólise dessas saponinas e sua metabolização no trato digestivo dos animais vão resultar na formação de glicuronídeos, que se ligam com os íons de cálcio e formam sais insolúveis que se depositam em forma de cristais comprometendo a excreção de metabólitos dos pigmentos de plantas no organismo. Estes cristais são responsáveis pela obstrução e inflamação do sistema biliar e necrose de hepatócitos periportais, tendo como resultado hepatite, icterícia e fotossensibilização. A intoxicação por Brachiaria spp. (B. decumbens, B. humidicola, B. brizantha) afeta bovinos, ovinos, caprinos, bubalinos e equinos; ocorre em qualquer época do ano, principalmente em bezerros, próximos ao desmame ou recém desmamados. Os animais jovens (cordeiros e bezerros) são mais suscetíveis do que os adultos. Animais introduzidos pela primeira vez em pastagens de Brachiaria spp. são mais suscetíveis à intoxicação. A consequência dessa intoxicação pode ser a fotossensibilização que é um aumento na suscetibilidade à luz ultra-violeta, onde radicais livres produzidos por reações fotodinâmicas podem lesar células e membranas lisossomais. São descritos, em bovinos, dois quadros clínicos diferentes, decorrentes da intoxicação: o emagrecimento progressivo e a fotossensibilização hepatógena, além de que quadros subclínicos aparentemente ocorrem, com menor produtividade. Anorexia, depressão, diminuição ou parada dos movimentos ruminais, fezes ressequidas, procura pela sombra e edema das orelhas ou outras partes do corpo são característicos inicialmente da fotossensibilização hepatógena, onde ocorre também inquietude, os animais se coçam em decorrência do prurido e sacodem a cabeça e orelhas. Não existem medidas preventivas (profiláticas) definidas para que não ocorra a intoxicação em rebanhos a serem introduzidos em pastagens de Brachiaria spp., principalmente quando são provenientes de áreas sem Brachiaria spp. Os animais intoxicados e com sinais clínicos devem ser retirados da pastagem que está causando a intoxicação.Brachiaria spp. contain lithogenic steroidal saponins that induce crystal formation in the biliary system. Hydrolysis of these saponins and its metabolism in the digestive tract of the animal will result in the formation of glucuronide, which bind to calcium ions and form insoluble salts which settle in the form of crystals affecting the excretion of metabolites of plant pigments in the body. These crystals are responsible for the obstruction and inflammation of the biliary system and periportal hepatocytes necrosis, resulting in hepatitis, icterus and photosensitization. Intoxication by Brachiaria spp. (B. decumbens, B. humidicola B. brizantha) affects cattle, sheep, goats, buffaloes and horses; it occurs at any time of year, especially in calves near weaning or recently weaned. Young animals (lambs and calves) are more susceptible than adults. Animals first introduced in Brachiaria spp. are more susceptible to poisoning. The consequence of this toxicity can be the photosensitivity which is an increase in susceptibility to ultra-violet light, where free radicals produced by photodynamic reactions can damage cell and lysosomal membranes. Are described in cattle, two different clinical conditions resulting from intoxication: the progressive weight loss and hepatogenous photosensitivity, and that subclinical frames apparently occur with lower productivity. Anorexia, depression, decreased or stopped the ruminal movements, dried feces, looking for shade and swelling of the ears or other body parts are the first characteristic of hepatogenous photosensitivity, in which also occurs anxiety, the animals scratch due to itching and shake their heads and ears. There are no define preventive (prophylactic) measures capable of not causing intoxication in livestock to be introduced in Brachiaria spp., especially when they are from areas without Brachiaria spp. Intoxicated animals with clinical signs should be removed from pasture that is causing the poisoning

  • Avaliação histopatológica do fígado de bovinos mantidos em pastagens de Brachiaria spp. provenientes de abatedouros no Brasil
    2016
    Co-Authors: Araujo, Rebekah Rank
    Abstract:

    A Brachiaria spp. contêm saponinas esteroidais litogênicas que induzem a formação de cristais no sistema biliar. A hidrólise dessas saponinas e sua metabolização no trato digestivo dos animais vão resultar na formação de glicuronídeos, que se ligam com os íons de cálcio e formam sais insolúveis que se depositam em forma de cristais comprometendo a excreção de metabólitos dos pigmentos de plantas no organismo. Estes cristais são responsáveis pela obstrução e inflamação do sistema biliar e necrose de hepatócitos periportais, tendo como resultado hepatite, icterícia e fotossensibilização. A intoxicação por Brachiaria spp. (B. decumbens, B. humidicola, B. brizantha) afeta bovinos, ovinos, caprinos, bubalinos e equinos; ocorre em qualquer época do ano, principalmente em bezerros, próximos ao desmame ou recém desmamados. Os animais jovens (cordeiros e bezerros) são mais suscetíveis do que os adultos. Animais introduzidos pela primeira vez em pastagens de Brachiaria spp. são mais suscetíveis à intoxicação. A consequência dessa intoxicação pode ser a fotossensibilização que é um aumento na suscetibilidade à luz ultra-violeta, onde radicais livres produzidos por reações fotodinâmicas podem lesar células e membranas lisossomais. São descritos, em bovinos, dois quadros clínicos diferentes, decorrentes da intoxicação: o emagrecimento progressivo e a fotossensibilização hepatógena, além de que quadros subclínicos aparentemente ocorrem, com menor produtividade. Anorexia, depressão, diminuição ou parada dos movimentos ruminais, fezes ressequidas, procura pela sombra e edema das orelhas ou outras partes do corpo são característicos inicialmente da fotossensibilização hepatógena, onde ocorre também inquietude, os animais se coçam em decorrência do prurido e sacodem a cabeça e orelhas. Não existem medidas preventivas (profiláticas) definidas para que não ocorra a intoxicação em rebanhos a serem introduzidos em pastagens de Brachiaria spp., principalmente quando são provenientes de áreas sem Brachiaria spp. Os animais intoxicados e com sinais clínicos devem ser retirados da pastagem que está causando a intoxicação. _______________________________________________________________________________ ABSTRACTBrachiaria spp. contain lithogenic steroidal saponins that induce crystal formation in the biliary system. Hydrolysis of these saponins and its metabolism in the digestive tract of the animal will result in the formation of glucuronide, which bind to calcium ions and form insoluble salts which settle in the form of crystals affecting the excretion of metabolites of plant pigments in the body. These crystals are responsible for the obstruction and inflammation of the biliary system and periportal hepatocytes necrosis, resulting in hepatitis, icterus and photosensitization. Intoxication by Brachiaria spp. (B. decumbens, B. humidicola B. brizantha) affects cattle, sheep, goats, buffaloes and horses; it occurs at any time of year, especially in calves near weaning or recently weaned. Young animals (lambs and calves) are more susceptible than adults. Animals first introduced in Brachiaria spp. are more susceptible to poisoning. The consequence of this toxicity can be the photosensitivity which is an increase in susceptibility to ultra-violet light, where free radicals produced by photodynamic reactions can damage cell and lysosomal membranes. Are described in cattle, two different clinical conditions resulting from intoxication: the progressive weight loss and hepatogenous photosensitivity, and that subclinical frames apparently occur with lower productivity. Anorexia, depression, decreased or stopped the ruminal movements, dried feces, looking for shade and swelling of the ears or other body parts are the first characteristic of hepatogenous photosensitivity, in which also occurs anxiety, the animals scratch due to itching and shake their heads and ears. There are no define preventive (prophylactic) measures capable of not causing intoxication in livestock to be introduced in Brachiaria spp., especially when they are from areas without Brachiaria spp. Intoxicated animals with clinical signs should be removed from pasture that is causing the poisoning

Voll E. - One of the best experts on this subject based on the ideXlab platform.

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2015., 2016
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae: Alternanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis. Família Asteraceae (Compositae): Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Emilia sonchifolia; Conyza spp.; Bidens spp.; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientalis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae: Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae: Commelina benghalensis; Murdannia nudiflora. Família Convolvulaceae: Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae: Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus. Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia. Família Lamiaceae: Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia. Família Poaceae: Avena fátua; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria insularis; Digitaria spp.; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Lolium multiflorum; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae: Portulaca oleracea; Talinum paniculatum. Família Rubiaceae: Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Spermacoce vertticilata; Família Sapindaceae Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae ; Nicandra physaloides; Solanum americanum. Plantas Daninhas resistentes a herbicidas. Espécies resistentes a herbicidas de diferentes mecanismos de ação, relatadas no Brasil. Glossário de termos botânicos.bitstream/item/126196/1/manual-de-identificacao-de-plantas-daninhas.pdf2. ed

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2015., 2015
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae: Alternanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis. Família Asteraceae (Compositae): Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Emilia sonchifolia; Conyza spp.; Bidens spp.; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientalis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae: Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae: Commelina benghalensis; Murdannia nudiflora. Família Convolvulaceae: Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae: Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus. Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia. Família Lamiaceae: Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia. Família Poaceae: Avena fátua; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria insularis; Digitaria spp.; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Lolium multiflorum; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae: Portulaca oleracea; Talinum paniculatum. Família Rubiaceae: Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Spermacoce vertticilata; Família Sapindaceae Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae ; Nicandra physaloides; Solanum americanum. Plantas Daninhas resistentes a herbicidas. Espécies resistentes a herbicidas de diferentes mecanismos de ação, relatadas no Brasil. Glossário de termos botânicos.201

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2006., 2013
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E., Oliveira E., Moriyama R. T.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae Altemanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis; Família Asteraceae (Compositae); Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Bidens spp.; Conyza spp.; Emilia sonchifolia; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientelis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae; Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae; Commelina benghalensis; Família Convolvulaceae; Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae; Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus; Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia; Família Lamiaceae; Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia; Família Poaceae; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria spp.; Digitaria insularis; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae; Portulaca oleracea; Talinum paniculatum; Família Rubiaceae; Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Família Sapindaceae; Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae; Nicandra physaloides; Solanum americanum; Glossário de termos botânicos.bitstream/item/58161/1/Documentos-274.pd

Ghimire, Sita R. - One of the best experts on this subject based on the ideXlab platform.

  • Brachiaria grass for sustainable livestock production in Rwanda under climate change
    'Springer Science and Business Media LLC', 2021
    Co-Authors: Mutimura M., Ghimire, Sita R.
    Abstract:

    Brachiaria grass is an important tropical forage of African origin. It produces high amount of palatable and nutritious biomass, tolerates abiotic and biotic stresses, improves soil fertility, increases livestock productivity, and reduces adversities of climate change. Since 2007, several improved Brachiaria grass cultivars (Brachiaria brizantha cvs. Marandú, MG4, Piatã, and Xaraés; B. decumbens cv. Basilisk; B. humidicola cvs. Humidicola and Llanero; Brachiaria hybrid cvs. Mulato, Mulato II, and Cayman; and other hybrid lines Bro2/0465, Bro2/1452, and Bro2/1485) have been introduced and evaluated in Rwanda for adaptation, biomass yields, animal nutrition, livestock productivity, and environmental qualities. Both on-farm and on-station evaluations of 13 improved Brachiaria grass cultivars and 2 checks – local Brachiaria grass and buffel grass at two different agroecological zones of Rwanda showed superior adaptation, higher biomass yields, and higher nutritive values of all Brachiaria grass cultivars compared to buffel grass. Subsequent study evaluating the impact of cutting regimes on agronomic and nutritional characteristics of improved Brachiaria cultivars and Napier grass showed forages harvested at 90 days after planting with high crude protein content (between 137 and 167 g/kg DM for Mulato II and Piatã, respectively) and high metabolizable energy (up to 9 MJ/kg DM for Piatã). These attributes have shown to increase animal production optimizing retention time of the particle phase of digesta in dairy cows which was shorter for Piatã (62.8 h) than Napier grass (83.1 h). Piatã had higher voluntary dry matter intake than Napier grass hence increased milk yield up to 50%. Furthermore, heifer fed on Mulato II had up to 54.7% more body weight and less enteric methane (14%) than heifers fed on Napier grass. These studies have shown Brachiaria grass as the most productive forage of high farmer preference due to its adaptation in low rainfall and acidic soils and the production of green foliage year-round. Therefore, improved Brachiaria grass has been promoted in 20 of 30 districts of Rwanda through various livestock development initiatives benefitting more than 4,800 farmers from South, Eastern, and Northern Provinces of Rwanda. In this chapter, we also discussed the prospects of Brachiaria grass in supporting the growing livestock sector in Rwanda and emerging challenges

  • Genetic diversity and population structure of Brachiaria (syn. Urochloa) ecotypes from Uganda
    2020
    Co-Authors: Namazzi C., Sserumaga J.p., Mugerwa S., Kyalo Martina, Mutai Collins K., Mwesigwa R., Djikeng Appolinaire, Ghimire, Sita R.
    Abstract:

    Brachiaria (syn. Urochloa) grass is an important tropical forage of African origin that supports millions of livestock and wildlife in the tropics. Overgrazing, conversion of grasslands for crop production and non-agricultural uses, and the introduction of improved forages have threatened the natural diversity of Brachiaria grass in Uganda. This study established a national collection of Brachiaria ecotypes in Uganda and analyzed them for genetic diversity and population structure using 24 simple sequence repeats (SSR) markers. These markers had a high discriminating ability with an average polymorphism information content (PIC) of 0.89 and detected 584 alleles in 99 ecotypes. Analysis of molecular variance revealed a high within populations variance (98%) indicating a high gene exchange or low genetic differentiation (PhiPT = 00.016) among the ecotype populations. The Bayesian model based clustering algorithm showed three allelic pools in Ugandan ecotypes. The principal component analysis (PCA) of ecotypes, and Neighbor-joining (NJ) tree of ecotypes and six commercial cultivars showed three main groups with variable membership coefficients. About 95% of ecotype pairs had Rogers’ genetic distance above 0.75, suggesting most of them were distantly related. This study confirms the high value of these ecotypes in Brachiaria grass conservation and improvement programs in Uganda and elsewhere.Department of Foreign Affairs and Trade, AustraliaSyngenta Foundation for Sustainable AgricultureBill & Melinda Gates FoundationSwedish International Development Cooperation AgencyDepartment for International Development, United KingdomPeer Revie

  • Fungal Endophytes from the Aerial Tissues of Important Tropical Forage Grasses \u3cem\u3e Brachiaria \u3c/em\u3e spp. in Kenya
    UKnowledge, 2020
    Co-Authors: Ghimire, Sita R., Njuguna Joyce, Kago Leah, Ahonsi Monday, Njarui Donald
    Abstract:

    Most, if not all plants in natural ecosystems are symbiotic with mycorrhizal fungi and/or fungal endophytes. This association between plant and fungi is believed to be over 400 million years old when plants first colonized the land (Redecker et al., 2000). These fungal symbionts play important roles on plant ecology, fitness, and evolution; shaping plant communities; and the community structure and diversity of associated organisms. The importance of fungal endophytes in cool season grasses production and effects of endophyte on the livestock health (Examples fescue toxicosis and ryegrass staggers) have been extensively investigated (Smith et al., 2009; di Menna et al., 2012). However, current understanding of fungal endophyte community of warm season grasses (including Brachiaria spp.) and the impact of these endophytes on livestock production is very limited. Therefore, this study aims to analyse fungal endophytes community inhabiting in the aerial tissues of important tropical grasses Brachiaria species from Kenya, an East African country representing place of origin for most of the Brachiaria species

  • Diversity of fungal endophytes associated with Rwandan Brachiaria ecotypes (Brachiaria spp)
    2020
    Co-Authors: Dusingize M.c., Mutai Collins, Mutimura M., Ghimire, Sita R.
    Abstract:

    Brachiaria species are important tropical forage grasses of East Africa origin. It is known to produce palatable and nutritious biomass for livestock, enhances nitrogen use efficiency, sequesters carbon and reduces greenhouse gas emissions. Despite significant potential of this grass; no information available on endophytic fungal associated with Rwandan Brachiaria ecotypes which can have impacts on plant protection under extreme environment. This study identified and characterized the Brachiaria associated fungal endophytes from the stems and leaves of 36 Rwandan Brachiaria ecotypes collected from three agro- ecological zone of Rwanda in 2014. DNA was extracted from the pure isolated fungal using PrepMan Kit and PCR amplification using 2ITS. Fungal endophytes were characterized in vitro by conducting bio-chemical tests for Phosphate solubilization, Indole-3-Acetic Acid (IAA) production, antagonism test, pathogenicity test and siderophores. The numbers of fungal species identified were 21species isolated from stems and leaves of 36 local Brachiaria. The most frequent species were Epicoccum nigrum followed by Cladosporium cladosporioides and Coprinopsis atramentaria.30.1% of total isolate fungal were positive for IAA (Auxins) , 47.3 % of the total isolates fungal were not pathogen to the plant host ;10.1% were antagonistic to Nigrospora sphaerica , 8.3% to Phoma herbarum and 5% to the Aspergillus flavus; 49 % of isolates fungal were able to produce siderophore, No of the ffungal isolates specieswas be able to solubilize Phosphate compound. Results showed that Brachiaria with associated fungal are diverse and contain significant number of endophytes, which need to be explored/conserved and applied to others forage crops in Rwanda.Peer Revie

  • Diversity of fungal endophytes associated with Rwandan Brachiaria ecotypes (Brachiaria spp)
    2020
    Co-Authors: Dusingize M.c., Mutai Collins, Mutimura M., Ghimire, Sita R.
    Abstract:

    Brachiaria species are important tropical forage grasses of East Africa origin. It is known to produce palatable and nutritious biomass for livestock, enhances nitrogen use efficiency, sequesters carbon and reduces greenhouse gas emissions. Despite significant potential of this grass; no information available on endophytic fungal associated with Rwandan Brachiaria ecotypes which can have impacts on plant protection under extreme environment. This study identified and characterized the Brachiaria associated fungal endophytes from the stems and leaves of 36 Rwandan Brachiaria ecotypes collected from three agro- ecological zone of Rwanda in 2014. DNA was extracted from the pure isolated fungal using PrepMan Kit and PCR amplification using 2ITS. Fungal endophytes were characterized in vitro by conducting bio-chemical tests for Phosphate solubilization, Indole-3-Acetic Acid (IAA) production, antagonism test, pathogenicity test and siderophores. The numbers of fungal species identified were 21species isolated from stems and leaves of 36 local Brachiaria. The most frequent species were Epicoccum nigrum followed by Cladosporium cladosporioides and Coprinopsis atramentaria.30.1% of total isolate fungal were positive for IAA (Auxins) , 47.3 % of the total isolates fungal were not pathogen to the plant host ;10.1% were antagonistic to Nigrospora sphaerica , 8.3% to Phoma herbarum and 5% to the Aspergillus flavus; 49 % of isolates fungal were able to produce siderophore, No of the ffungal isolates specieswas be able to solubilize Phosphate compound. Results showed that Brachiaria with associated fungal are diverse and contain significant number of endophytes, which need to be explored/conserved and applied to others forage crops in Rwanda

Gazziero D. L. P. - One of the best experts on this subject based on the ideXlab platform.

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2015., 2016
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae: Alternanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis. Família Asteraceae (Compositae): Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Emilia sonchifolia; Conyza spp.; Bidens spp.; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientalis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae: Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae: Commelina benghalensis; Murdannia nudiflora. Família Convolvulaceae: Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae: Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus. Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia. Família Lamiaceae: Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia. Família Poaceae: Avena fátua; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria insularis; Digitaria spp.; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Lolium multiflorum; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae: Portulaca oleracea; Talinum paniculatum. Família Rubiaceae: Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Spermacoce vertticilata; Família Sapindaceae Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae ; Nicandra physaloides; Solanum americanum. Plantas Daninhas resistentes a herbicidas. Espécies resistentes a herbicidas de diferentes mecanismos de ação, relatadas no Brasil. Glossário de termos botânicos.bitstream/item/126196/1/manual-de-identificacao-de-plantas-daninhas.pdf2. ed

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2015., 2015
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae: Alternanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis. Família Asteraceae (Compositae): Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Emilia sonchifolia; Conyza spp.; Bidens spp.; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientalis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae: Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae: Commelina benghalensis; Murdannia nudiflora. Família Convolvulaceae: Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae: Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus. Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia. Família Lamiaceae: Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia. Família Poaceae: Avena fátua; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria insularis; Digitaria spp.; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Lolium multiflorum; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae: Portulaca oleracea; Talinum paniculatum. Família Rubiaceae: Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Spermacoce vertticilata; Família Sapindaceae Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae ; Nicandra physaloides; Solanum americanum. Plantas Daninhas resistentes a herbicidas. Espécies resistentes a herbicidas de diferentes mecanismos de ação, relatadas no Brasil. Glossário de termos botânicos.201

  • Manual de identificação de plantas daninhas da cultura da soja.
    Londrina: Embrapa Soja 2006., 2013
    Co-Authors: Gazziero D. L. P., Pitelli R. A., Brighenti A. M., Lollato R. P., Voll E., Oliveira E., Moriyama R. T.
    Abstract:

    Família Amaranthaceae Altemanthera tenella; Amaranthus deflexus; Amaranthus hybridus; Amaranthus spinosus; Amaranthus viridis; Família Asteraceae (Compositae); Acanthospermum hispidum; Acanthospermum australe; Ageratum conyzoides; Bidens spp.; Conyza spp.; Emilia sonchifolia; Galinsoga parviflora; Melampodium perfoliatum; Parthenium hysterophorus; Porophyllum ruderale; Senecio brasiliensis; Siegesbeckia orientelis; Sonchus oleraceus; Tridax procumbens; Família Brassicaceae; Coronopus didymus; Raphanus raphanistrum; Família Commelinaceae; Commelina benghalensis; Família Convolvulaceae; Ipomoea grandifolia; Ipomoea nil; Ipomoea purpúrea; Família Euphorbiaceae; Chamaesyce hirta; Chamaesyce hyssopifolia; Croton glandulosus; Euphorbia heterophylla; Phyllanthus tenellus; Família Fabaceae; Desmodium tortuosum; Senna obtusifolia; Família Lamiaceae; Hyptys suaveolens; Leonotis nepetifolia; Leonurus sibiricus; Família Malvaceae; Sida rhombifolia; Família Poaceae; Brachiaria brizantha; Brachiaria decumbens; Brachiaria plantaginea; Cenchrus echinatus; Chloris spp.; Digitaria spp.; Digitaria insularis; Echinochloa colonum; Eleusine indica; Panicum maximum; Pennisetum setosum; Rhynchelytrum repens; Setaria geniculata; Sorghum halepense; Família Portulacaceae; Portulaca oleracea; Talinum paniculatum; Família Rubiaceae; Richardia brasiliensis; Spermacoce latifólia; Família Sapindaceae; Cardiospermum halicacabum; Família Solanaceae; Nicandra physaloides; Solanum americanum; Glossário de termos botânicos.bitstream/item/58161/1/Documentos-274.pd